本試劑盒僅供科研使用。用于體外定量檢測兔血清、血漿或細(xì)胞培養(yǎng)上清液中的TNF-α濃度。使用前請仔細(xì)閱讀說明書并檢查試劑組分是否完整。如有產(chǎn)品包裝破損或質(zhì)量投拆，請?jiān)谑盏截浺粋€(gè)月之內(nèi)聯(lián)系我們。

TNF-α簡介：

腫瘤壞死因子（TNF-α）是由單核細(xì)胞和巨噬細(xì)胞產(chǎn)生的多肽類細(xì)胞因子，在炎癥反應(yīng)、免疫系統(tǒng)的發(fā)展、細(xì)胞程序性死亡和脂代謝中起重要的作用。兔TNF-α由35個(gè)氨基酸的胞內(nèi)部，21個(gè)氨基酸的穿膜部分，179個(gè)氨基酸的胞外部分組成，從ECD部分來說，兔TNF-α與牛，貓，馬，小鼠，豬，大鼠和恒河猴等TNF-α有76%~83%的氨基酸同源性。

TNF-α功能主要是在免疫反應(yīng)中是一個(gè)多功能的調(diào)節(jié)器甚至作為一個(gè)強(qiáng)烈的熱原性物質(zhì)刺激中性粒細(xì)胞，改變血管內(nèi)皮細(xì)胞的特性，調(diào)節(jié)其它組織的代謝活性。TNF-α也可通過抑制脂蛋白脂肪酶的活性而導(dǎo)致惡液病。愛潑斯坦病毒引起的B細(xì)胞活化也可被TNF-α所抑制。巨噬細(xì)胞表面的淋巴因子和肉毒素也可介導(dǎo)包括上皮細(xì)胞、內(nèi)皮細(xì)胞和腫瘤細(xì)胞等產(chǎn)生TNF-α。據(jù)報(bào)道干擾素能顯著提高TNF-α的分泌量。

TNF-α在關(guān)節(jié)炎和其它組織的炎癥的發(fā)病機(jī)理中起重要作用。TNF-α也參與了包括哮喘、克羅恩氏病、類風(fēng)濕性關(guān)節(jié)炎、神經(jīng)性疼痛、肥胖癥、型糖尿病、自身免疫病和腫瘤等疾病的發(fā)生

檢測原理:

本試劑盒采用雙抗體夾心ELISA法檢測樣本中兔TNF-α的濃度。兔TNF-α捕獲抗體已預(yù)包被于酶標(biāo)板上，當(dāng)加入標(biāo)本或參考品時(shí)，其中的兔TNF-α會與捕獲抗體結(jié)合，其它游離的成分通過洗滌的過程被除去。當(dāng)加入生物素化的抗兔TNF-α抗體后，抗兔TNF-α抗體與兔TNF-α接合，形成夾心的免疫復(fù)合物，其它游離的成分通過洗滌的過程被除去。隨后加入辣根過氧化物酶標(biāo)記的親合素。生物素與親合素特異性結(jié)合，親合素連接的酶就會與夾心的免疫復(fù)合物連接起來；其它游離的成分通過洗滌的過程被除去。最后加入顯色劑，若樣本中存在TNF-α將會形成免疫復(fù)合物，辣根過氧化物酶會催化無色的顯色劑氧化成藍(lán)色物質(zhì)，在加入終止液后呈黃色。通過酶標(biāo)儀檢測，讀其450nm處的OD值，兔TNF-α濃度與OD450值之間呈正比，通過參考品繪制標(biāo)準(zhǔn)曲線，對照未知樣本中OD值，即可算出標(biāo)本中TNF-α濃度。

兔TNF-α定量分析酶聯(lián)免疫檢測試劑盒組成:

標(biāo)本收集:

1.標(biāo)本的收集請按下列流程進(jìn)行操作；

A.細(xì)胞上清標(biāo)本離心去除懸浮物后即可；

B.血清標(biāo)本應(yīng)是自然凝固后，取上清，避免在冰箱中凝固血液；

C.血漿標(biāo)本，推薦用EDTA的方法收集

D.若待測樣本不能及時(shí)檢測，標(biāo)本收集后請分裝，凍存于－20℃，避免反復(fù)凍融。

2.血清標(biāo)本不應(yīng)添加任何防腐劑或抗凝劑；

3.標(biāo)本應(yīng)清澈透明，檢測前樣本中如有懸浮物應(yīng)通過離心去除。

4.請勿使用溶血，高血脂或污染的標(biāo)本檢測，否則結(jié)果將不準(zhǔn)確。

注：兔血清或血漿樣本請用樣本分析緩沖液做倍比稀釋后再檢測。

注意事項(xiàng):

1.試劑盒請保存在2～8℃。

2.濃縮洗滌液因在低溫下可能有結(jié)晶，請水浴加熱使結(jié)晶完全溶解后再配制工作液。

3.標(biāo)準(zhǔn)品復(fù)溶加樣后，剩余部份請丟棄。

4.底物請勿接觸氧化劑和金屬。

5.加樣時(shí)，請及時(shí)更換槍頭，避免交叉污染。

6.嚴(yán)禁混用不同批號的試劑盒組份。

7.充分混勻?qū)ΡＷC反應(yīng)結(jié)果的準(zhǔn)確性很重要，在加液后請輕輕叩擊邊緣以保證混勻。

8.室溫反應(yīng)，請嚴(yán)格控制在25～28℃。

9.洗滌過程是至關(guān)重要的，洗滌不充分會使精確度下降并導(dǎo)致結(jié)果誤差較大。

10.試驗(yàn)中標(biāo)準(zhǔn)品和樣本檢測時(shí)建議作雙復(fù)孔。

11.加樣過程中避免氣泡的產(chǎn)生。

12.血清和血漿標(biāo)本的檢測時(shí)，檢測抗體的孵育時(shí)間應(yīng)適當(dāng)延長。

檢測前準(zhǔn)備工作:

1. 試劑盒自冰箱中取出后應(yīng)置室溫（25-28℃）平衡20分鐘；每次檢測后剩余試劑請及時(shí)于2～8℃保存。

2. 將濃縮洗滌液用雙蒸水或去離子水稀釋(1份加19份水)。

3. 如有5×標(biāo)準(zhǔn)品稀釋液用雙蒸水或去離子水稀釋(1份加4份水)。

4. 標(biāo)準(zhǔn)品:按標(biāo)簽復(fù)溶體積用1X標(biāo)準(zhǔn)品稀釋液復(fù)溶使TNF-α終濃度達(dá)到2000pg/ml，室溫反應(yīng)，請嚴(yán)格控制在25～28℃，靜置15~20分鐘后輕輕混勻（建議抽吸幾次）待徹底溶解，用標(biāo)準(zhǔn)品稀釋液倍比梯度稀釋后依次加入檢測孔中。（標(biāo)準(zhǔn)曲線取七個(gè)點(diǎn)，最高濃度為2000pg/ml,標(biāo)準(zhǔn)品稀釋液直接加入作為0濃度.）

5. 

洗滌方法:

自動(dòng)洗板機(jī)或人工洗板：每孔洗滌液為300ul，注入與吸出間隔15-30秒。最后一次洗板完成后將板倒扣著在厚吸水紙上用力拍干。

實(shí)驗(yàn)過程需自備的材料：

1不同規(guī)格的加樣槍及相應(yīng)的槍頭；  

2.酶標(biāo)儀；

3.自動(dòng)洗板機(jī)；                     

4.去離子水或雙蒸水；

操作步驟:

1.通過計(jì)算并確定一次性實(shí)驗(yàn)所需的板條數(shù)，取出所需板條放置在框架內(nèi)，暫時(shí)用不到板條請放回鋁箔袋密封，保存于4℃。

2.建議設(shè)置本底較正孔，即空白孔,設(shè)置方法為該孔只加TMB顯色液和中止液。每次實(shí)驗(yàn)均需做標(biāo)準(zhǔn)品對照并畫出標(biāo)準(zhǔn)曲線。

3.分別將樣品或不同濃度標(biāo)準(zhǔn)品按照100μl/孔加入相應(yīng)孔中，用封板膜封住反應(yīng)孔，室溫（25-28℃）孵育120分鐘。對于血清血漿樣本，先加50ul的樣本分析緩沖液，再加50uL樣本。如檢測超出范圍，請先加50ul的樣本分析緩沖液，再加用標(biāo)準(zhǔn)品稀釋液稀釋后的樣本50μl檢測。請注意記錄好樣品的稀釋倍數(shù)，此處加樣量50ul相當(dāng)于已稀釋了2倍。

4.洗板5次，且最后一次置厚吸水紙上拍干。

5.加入生物素化抗體工作液(100ul/孔)。用封板膠紙封住反應(yīng)孔，室溫（25-28℃）孵育60分鐘。  

6.洗板5次，且最后一次置厚吸水紙上拍干。

7.加入親和素連接的HRP酶工作液(100ul/孔)。用封板膠紙封住反應(yīng)孔，避光室溫（25-28℃）孵育20分鐘。

8.洗板5次，且最后一次置厚吸水紙上拍干。

9.加入顯色劑TMB100ul/孔，避光室溫（25-28℃）孵育20分鐘。

10.加入終止液50ul/孔,混勻后即刻測量OD₄₅₀值。

結(jié)果判斷:

1.復(fù)孔的值在20%的差異范圍內(nèi)結(jié)果才有效，復(fù)孔的值平均后可作為測量值。

2.每個(gè)標(biāo)準(zhǔn)品或標(biāo)本的OD值應(yīng)減去本底校正孔的OD值。

3.手工繪制標(biāo)準(zhǔn)曲線。以標(biāo)準(zhǔn)品濃度作橫坐標(biāo)，OD值作縱坐標(biāo)，以平滑線連接各標(biāo)準(zhǔn)品的坐標(biāo)點(diǎn)。通過標(biāo)本的OD值可在標(biāo)準(zhǔn)曲線上查出其濃度。

4.若標(biāo)本OD值高于標(biāo)準(zhǔn)曲線上限，應(yīng)適當(dāng)稀釋后重測，計(jì)算濃度時(shí)應(yīng)乘以稀釋倍數(shù)。

典型數(shù)值和參考曲線

兔TNF-α參考標(biāo)準(zhǔn)曲線（向市場部索要）

靈敏度，特異性和重復(fù)性:

1.靈敏度：多次重復(fù)結(jié)果表明，最小檢出量為28.4pg/ml。

2.特異性：與人TNF-α、大鼠TNF-α、小鼠TNF-α、豬TNF-α等沒有交叉反應(yīng)。

3.重復(fù)性：板內(nèi)，板間變異系數(shù)均<10%.

參考文獻(xiàn):

1. Schall, T.J. et al. (1990) Cell 61:361.

2. Ito, H. et al. (1986) DNA 5:157.

3. Perez, C. et al. (1990) Cell 63:251.

4. Dembic, Z. et al. (1990) Cytokine 2:231.

5. Moss, M.L. et al. (1997) Nature 385:733.

6. Loetscher, H. et al. (1991) J. Biol. Chem. 266:18324